Studies on the light-induced reversible xanthophyll-conversions in Chlorella and spinach leaves

Abstract

Using new methods in thin-layer chromatography, experiments were carried out to prove the light-induced changes in the quantity of various xanthophylls in Chlorella and spinach leaves. The probable connection of these interconversions to electron transport in photosynthesis was demonstrated. The kinetics of these xanthophyll conversions were investigated during strong illumination and in the succeeding dark period (Chlorella). Already after illumination of 1 min one can detect a decrease of the di-epoxide xanthophyll violaxanthin and a corresponding increase of the epoxide-free zeaxanthin. The intermediate of this interconversion is the mono-epoxide antheraxanthin. Neoxanthin exhibits no change in concentration under the given light intensity and an illumination time of 60 min and more; the same result can be observed with the other carotenoids (α-carotene, β-carotene, lutein, lutein-5,6-epoxyd) and the chlorophylls a and b. The light-induced formation of zeaxanthin is not correlated with those pigment interconversions which are photooxidative in their nature and which may be detected only after long illuminations. However, by using damaged, e.g., briefly heated Chlorella cells, a photooxidative-induced decrease of carotenes and chlorophyll a and a smaller decrease of xanthophylls and chlorophyll b could already be demonstrated after illumination of 15 min. In this case the ratio xanthophylls/ carotenes increases. The transformation violaxanthin → antheraxanthin → zeaxanthin (“forward-reaction”) is induced not only by an illumination with white light (point 2) but also with red light (>600 nm); that means the reaction proceeds at a wavelength which cannot be absorbed by the xanthophylls themselves. Chlorophyll acts as light-acceptor. The “forward-reaction” does not proceed after the cells have been heated for a short time. The presence of inhibitors of light-reaction II in photosynthesis such as o-phenanthroline, hydroxylamine and DCMU entirely suppresses the above reaction. The inhibition by DCMU can be reversed by substances (in Chlorella) which initiate or increase the cyclic electron transport at chlorophyll a_I: vitamin K₅ and hexylresorcinol. In contrast to its effect in chloroplasts (unpublished results), salicylaldoxime is only a very weak inhibitor of xanthophyll-conversion. Cyanide does not influence the “forward-reaction”; furthermore the reaction can be observed under aerobic and anaerobic conditions. The light-induced formation of zeaxanthin is entirely suppressed by the uncouplers CCCP and methylamine in concentrations of 10^-4 M and 5×10^-4 M, respectively. The light-independent backward-reaction zeaxanthin → antheraxanthin → violaxanthin, which normally prevents a high accumulation of zeaxanthin, does not proceed under anaerobic conditions. Therefore under such conditions accumulation of zeaxanthin can be observed even in dim light. The results indicate that the light-induced transformation violaxanthin → antheraxanthin → zeaxanthin, which consists in the light-induced splitting of the epoxide oxygen from violaxanthin, is not identical with the process which cases the release of oxygen in photosynthesis. There is evidence, however, that the xanthophyll-conversion is coupled with that electron-transport which goes on between reduced plastoquinone and oxidized chlorophyll a_I; energy-rich compounds which are formed in this step of electron transport or ATP itself apparently is responsible for the cleavage of the oxygen from violaxanthin and for the resulting formation of zeaxanthin. Mit Hilfe neuer dünnschichtchromatographischer Methoden wurden quantitative Untersuchungen über die lichtinduzierten Mengenänderungen der Xanthophylle in Chlorella und Spinatblättern durchgeführt und die möglichen Zusammenhänge dieser Mengenänderungen mit den Elektronentransport-Vorgängen bei der Photosynthese aufgezeigt. Der zeitliche Verlauf dieser Xanthophyll-Umwandlungen wurde während starker Belichtung und in nachfolgender Dunkelheit (Chlorella) untersucht. Die lichtinduzierte Violaxanthin → Antheraxanthin → Zeaxanthinumwandlung (”Hin-Reaktion“) findet auch im Rotlicht (>600nm) statt. Als Lichtacceptor fungiert das Chlorophyll. Diese Umwandlung hat nichts mit Pigmentveränderungen zu tun, die photooxydativer Natur sind, die erst nach längerer Belichtung in Erscheinung treten und die zu einer Erhöhung des Verhältnisses Xanthophylle/Carotine führen. Die Hin-Reaktion unterbleibt nach kurzzeitiger Erhitzung der Zellen. Sie wird ferner durch Hemmstoffe der Lichtreaktion II bei der Photosynthese, nämlich o-Phenanthrolin, Hydroxylamin und DCMU vollständig unterbunden. Die Hemmung durch. DCMU kann (in Chlorella) durch Substanzen wieder aufgehoben werden, welche einen cyclischen Elektronentransport am Chlorophyll a_I hervorrufen oder verstärken: Vitamin K₅ und Hexylresorcin. Im Unterschied zu Chloroplasten (unveröffentlicht) wird die Xanthophyllumwandlung durch den Kupfer-Komplexbildner Salicylaldoxim nur schwach gehemmt. Cyanid beeinflußt die Hin-Reaktion nicht. Sie läuft außerdem unter aeroben und anaeroben Bedingungen gleichermaßen ab. Die Entkoppler CCCP und Methylamin unterbinden die lichtbedingte Zeaxanthin-Bildung bei Konzentrationen von 10^-4 bzw. 5×10^-4 m bereits vollständig. Die lichtunabhängige Rückumwandlung Zeaxanthin → Antheraxanthin → Violaxanthin verhindert normalerweise eine stärkere lichtinduzierte Ansammlung von Zeaxanthin; diese Rückumwandlung wird in einer N₂-Atmosphüre vollständig gehemmt. Unter solchen Bedingungen kann deshalb auch in schwachem Licht eine Akkumulation von Zeaxanthin beobachtet werden. Die Ergebnisse zeigen, daβ die lichtabhäangige Violaxanthin → Antheraxanthin → Zeaxanthin-Umwandlung indirekt an einen Transport von Elektronen gekoppelt ist, welcher zwischen dem lichtreduzierten Plastochinon und dem lichtoxydierten Chlorophyll a₁ abläuft die bei diesem Elektronentransport gebildeten (energiereichen) Verbindungen oder das ATP selbst stehen in ursächlichem Zusammenhang mit der [O]-Abspaltung aus dem Violaxanthin und der daraus resultierenden Bildung von Zeaxanthin.